Chicken LIF(Leukemia Inhibitory Factor) ELISA Kit
雞LIF（白血病抑制因子）ELISA試劑盒
檢測原理：
信裕生物生產(chǎn)的ELISA試劑盒采用抗體夾心法:將抗雞LIF抗體包被于酶標板上，標本和標準品中的雞LIF與抗體結(jié)合，加入生物素化的抗雞LIF抗體，再加入ABC復合物與生物素抗體結(jié)合，形成免疫復合物，然后加入TMB顯色底物，顯色劑顯藍色，最后加終止液變黃色，游離的成分被洗去。在450 nm處測OD值，雞LIF濃度與OD值之間呈正比，可通過繪制標準曲線計算出標本中LIF的濃度。
檢測范圍：62.5-22800pg/ml
靈敏度：37.5pg/ml
別名：LIF(Leukemia Inhibitory Factor)/CDF/D factor/DIA/differentiation inhibitory activity/differentiation stimulating factor/Differentiation-stimulating factor/Emfilermin
標本收集與試劑準備:
1、血清、血漿樣本收集應(yīng)使用一次性的無熱原，無內(nèi)毒素試管（EDTA、檸檬酸鹽、肝素抗凝均可），血清、血漿避免使用溶血，高血脂標本，標本懸浮物應(yīng)離心去除，使標本清澈透明。待測樣本應(yīng)盡早檢測，2-8℃保存48小時；更長時間須冷凍（-20℃或-80℃）保存，避免反復凍融。
2、洗滌液配置：用蒸餾水1:20稀釋（示例：1ml濃縮洗滌液加入19ml的蒸餾水）
3、標準品配制：取7個1.5ml離心管，分別標注1/2,1/4,1/8,1/16,1/32,1/64，blank。從第一至七管中分別加入標準品/樣品稀釋液300ul。在第一管中加入標準品溶液300ul（標準品濃度），置于漩渦混合器上混勻后用加樣器吸出300ul，移至第二管。如此反復作對倍稀釋，從第六管中吸出300ul棄去，第七管為空白對照。(建議標準曲線使用以下濃度: 1/2,1/4,1/8,1/16,1/32,1/64，blank)。
4、生物素化抗體工作液配置:使用前20分鐘，用生物素化抗體稀釋液將100×生物素化抗體稀釋成1×工作液，根據(jù)所需用量配置，當日使用，剩余棄之。
5、ABC復合物工作液配置:使用前20分鐘，用ABC復合物稀釋液將100×濃縮ABC復合物稀釋成1×工作液，當日使用，剩余棄之。
6、如果您的樣本中檢測物濃度高于標準品最高值，建議重新檢測，請根據(jù)實際情況，適當倍數(shù)稀釋(建議做預實驗，以確定稀釋倍數(shù))。
檢測程序:
1、微孔板使用前洗板2次，向濾紙印干后，請立即使用。
2、加樣：每孔各加入標準品或待測樣品100ul，將反應(yīng)板混勻后置37℃，90分鐘,然后甩去酶標板內(nèi)液體，向濾紙上印干，不洗板。
3、每孔加入1×的生物素化抗體工作液100ul，混勻后置37℃，60分鐘。
4、洗板：用洗滌液將微孔板充分洗滌3次，向濾紙上印干。
5、每孔加入1×的ABC復合物工作液100ul，混勻后置37℃，30分鐘。
6、洗板：用洗滌液將反應(yīng)板充分洗滌5次，向濾紙上印干。
7、每孔加入底物工作液90ul，混勻后置37 ℃暗處反應(yīng)3-20分鐘（具體顯色時間根據(jù)顯色結(jié)果而定）。
8、每孔加入50ul終止液，混勻，30分鐘內(nèi)用酶標儀在450nm處測吸光值。
結(jié)果判斷與計算：
1、所有OD值建議減除空白值后再行計算，如空白OD低于0.1，也可以直接計算。
2、以標準品濃度作橫坐標，OD值作縱坐標，手工繪制或用軟件繪制標準曲線，根據(jù)樣品OD值計算出相應(yīng)含量，再乘上稀釋倍數(shù)即可。
注意事項:
1、在試驗中標準品和樣本檢測時建議作雙孔檢測，每次檢測都應(yīng)做標準曲線。
2、洗滌過程很關(guān)鍵，洗滌不充分將導致精確度誤差及OD值錯誤地升高，從冰箱中取出的濃縮洗滌液可能 有結(jié)晶,屬于正常現(xiàn)象，37℃水浴使結(jié)晶完全溶解后再配制洗滌液。
3、檢測時所有試劑都要恢復到室溫，板條開封后剩余板條需封好，放回袋中2 個月內(nèi)用完。
4、試劑盒使用超敏TMB溶液，若顯色過深會出現(xiàn)絮狀物，屬正常現(xiàn)象，不影響結(jié)果判讀。
5、僅用于科研，不能用于臨床診斷！
關(guān)鍵字： LIF;白血病抑制因子;LIF ELISA Kit;雞LIF ELISA試劑盒;
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