本試劑盒采用可以特異性結合 DNA 的離心吸附柱和獨特的緩沖液系統(tǒng)，提取組織和細胞的基因組 DNA。離心吸附柱中采用的硅基質材料，采用特有新型材料，能夠高效、專一吸附 DNA，可限度去除雜質蛋白及細胞中其他有機化合物。 提取的基因組 DNA 片段大，純度高，質量穩(wěn)定可靠。使用本試劑盒提取的基因組DNA 可用于各種常規(guī)操作，包括酶切、 PCR、文庫構建、Southern 雜交等實驗。

操作步驟：

使用前請先在漂洗液中加入無水乙醇，加入休積請參照瓶體上的標簽。所有離心步驟均為使用臺式離心機在室溫下離心。

1、樣品的處理：

a、細胞：取 1×106-1×107 個懸浮培養(yǎng)細胞，12000rpm 離心 1min 收集細胞，貼壁細胞先用胰蛋白酶消化處理，再用預冷的 PBS 吹打成細胞懸液，然后 12000rpm 離心 1min 收集細胞，盡量除去上清，加 200μL 溶液 A，振蕩至徹底混勻。

b、組織：組織量不宜過大，一般不要超過 25mg，可以使用勻漿器勻漿，用液氮研磨成粉末狀，再用預冷的 PBS 或無菌水充分懸浮，然后 12000rpm 離心 1min 收集細胞，盡量除去上清，加 200μL 溶液 A，振蕩至徹底混勻。

2、向懸浮液中加入 20μL 的 RNase A (10mg/ml)，55℃放置 15min。

3、加入 20μL 的蛋白酶 K( 10mg /ml )，充分顛倒混勻，55℃水浴消化，細胞消化時間較短，組織消化時間較長，一般需要 1-3 個小時才能完成（鼠尾需要消化過夜）。消化期間可顛倒離心管混勻數次，直至樣品消化完全為止。消化完全的指標是：液體清亮及粘稠。

4、加入 200μL 體積溶液 B，充分顛倒混勻，如出現白色沉淀，可放置于 75℃ 15-30min，沉淀即會消失，不影響后續(xù)實驗。如溶液未變清亮，說明樣品消化不徹底，可能導致提取的 DNA 量少及不純，還有可能導致堵塞吸附柱。

5、加入 200μL 無水乙醇，充分混勻，此時可能會出現絮狀沉淀，不影響 DNA 的提取，可將溶液和絮狀沉淀都加入吸附柱中。

6、12000rpm 離心 1min，棄廢液，將吸附柱放入收集管中。

7、向吸附柱中加入 600μL 漂洗液(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇)， 12000rpm 離心 1min，棄廢液，將吸附柱放入收集管中。

8、向吸附柱中加入 600μL 漂洗液，12000rpm 離心 1min，棄廢液，將吸附柱放入收集管中。

9、12000rpm 離心 2min，將吸附柱敞口置于室溫或 50℃溫箱放置數分鐘，目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，否則漂洗液中的乙醇會影響后續(xù)的實驗如酶切、PCR 等。

10、將吸附柱放入一個干凈的離心管中，向吸附膜中央懸空滴加 50-200μL 經 65℃水浴預熱的洗脫液，室溫放置5min，12000rpm 離心 2min。

11、可將離心所得洗脫液再加入吸附柱中，12000rpm 離心 2min，即可得到高質量的基因組 DNA。

注意事項:

1、試劑盒拆封后，RNase A和蛋白酶K需放置-20℃保存。

2、樣品應避免反復凍融，否則會導致提取的DNA片段較小且提取量也下降。

3、如果試劑盒中的溶液出現沉淀，可在65℃水浴中重新溶解后再使用，不影響效果。

4、洗脫緩沖液的體積不少于50μL，體積過小會影響回收效率：洗脫液的pH值對洗脫效率也有影響，若需要用水做洗脫液應保證其pH值在8.0左右(可用NaOH將水的pH值調至此范圍)，pH 值低于7.0會降低洗脫效率。