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細菌基因組DNA快速提取試劑盒(帶蛋白酶K)的應(yīng)用

2021/2/24 9:54:27

背景[1-3]

細菌基因組DNA快速提取試劑盒(帶蛋白酶K)用于細菌基因組DNA的小量提取。其純化原理是利用細胞裂解液裂解細胞釋放基因組DNA,由硅膠膜柱可逆吸附基因組DNA,經(jīng)蛋白酶消化、漂洗液清洗除去蛋白質(zhì)、脂質(zhì)等雜質(zhì)后,用純化液洗脫獲得基因組DNA。本產(chǎn)品可從0.5-2 ml對數(shù)生長期的菌液(不超過106–108個)中提取到3-20μg超純基因組DNA(OD260/280=1.7-1.9),此基因組DNA可直接用于酶切、PCR等后續(xù)實驗。

細菌DNA瓊脂糖膠圖

操作方法

1取0.5-2 ml處于對數(shù)生長期菌液,置于1.5 ml離心管中。12,000 rpm離心1min,棄上清。

2向收集到的菌體沉淀中加入200μl緩沖液DS,用漩渦振蕩器劇烈振蕩直至菌體徹底懸浮。

3加入20μl蛋白酶K溶液,混勻。

4加入220μl裂解液MS,漩渦振蕩混勻,直至形成均一的懸浮液。65℃溫浴10min。溶液應(yīng)變清亮,簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。

5加入220μl無水乙醇,上下顛倒混勻。此時可能出現(xiàn)絮狀沉淀,將溶液及絮狀沉淀轉(zhuǎn)移到純化柱中。12,000 rpm離心1min,棄濾液。

6加入500μl去蛋白液PS。12,000 rpm離心1min,棄濾液。

7加入500μl漂洗液PE。12,000 rpm離心1min,棄濾液。

8加入500μl漂洗液PE。12,000 rpm離心1min,棄濾液。

9 12,000 rpm離心3min,以徹底去除純化柱中殘留的液體。

10將純化柱置于新的1.5 ml離心管中。向純化柱中央處,懸空加入30-100μl洗脫液TE。室溫放置2min。于12,000 rpm離心2min,管底即為高純度基因組DNA。-20℃保存。

應(yīng)用[4][5]

用于金磁微粒純化細菌基因組DNA方法的研究

磁性復(fù)合粒子特有的超順磁性使其在外加磁場中反復(fù)操作而不聚集,較大的比表面積又保證了生物分子在其表面的固定化容量,與傳統(tǒng)的液相和離心柱式固相純化核酸純化方法相比,基于磁性復(fù)合微粒的核酸純化法具有更多的優(yōu)勢,如純化過程簡便快速、無需離心操作、不涉及有毒污染試劑,可適于大規(guī)模自動化工作站使用等,將成為未來核酸純化的主導(dǎo)發(fā)展方向。

以金磁微粒(GoldMag(R)particles)為載體,對細菌基因組DNA的純化方法進行了探討。采用簡單的氯化鈉/乙醇結(jié)合體系,建立了從革蘭氏陰性菌中純化基因組DNA的方法。

分別以大腸桿菌和銅綠假單胞菌為樣本,對純化方法進行評價;并將該法與商品化試劑盒進行比較,純化得到的基因組DNA可成功用于PCR擴增等下游應(yīng)用。

實驗結(jié)果表明:該方法可從500μl大腸桿菌培養(yǎng)液(OD600=3.0)中純化得到約20μg的基因組DNA,產(chǎn)率約是商品化試劑盒TIANamp Bacteria DNA Kit的3倍,其OD260/OD280比值在1.7-1.9之間,能夠滿足下游PCR反應(yīng)的要求。

以DNA產(chǎn)率為指標,純化大腸桿菌基因組DNA的平均批內(nèi)差為3.98%、批間差為8.41%,純化銅綠假單胞菌基因組DNA的平均批內(nèi)差為7.32%、批間差為10.67%。方法具有較好的穩(wěn)定性和重復(fù)性。

以枯草芽孢桿菌為樣本,初步探索了從革蘭氏陽性菌中純化基因組DNA的方法,對溶菌酶用量、RNase用量和樣本處理方式進行了優(yōu)化,結(jié)果表明:方法可從500μl枯草芽孢桿菌培養(yǎng)液(OD600=3.0)中純化得到2-4μg的基因組DNA,其OD260/OD280比值在1.7-1.9之間,并能滿足下游PCR實驗擴增要求。

參考文獻

[1]DNA,RNA,and Protein Extraction:The Past and The Present[J].Siun Chee Tan,Beow Chin Yiap,Joakim Lundeberg.Journal of Biomedicine and Biotechnology.2009

[2]Extraction of PCR-ready DNA from Staphylococcus aureus bacteriophages using carboxyl functionalized magnetic nonporous microspheres[J].Journal of Chromatography B.2009(7)

[3]Specific magnetic bead-based capture of free fetal DNA from maternal plasma[J].Transfusion and Apheresis Science.2009(3)

[4]Bacteria capture,lysate clearance,and plasmid DNA extraction using pH-sensitive multifunctional magnetic nanoparticles[J].Zhi Shan,Qi Wu,Xianxiang Wang,Zhongwu Zhou,Ken D.Oakes,Xu Zhang,Qianming Huang,Wanshen Yang.Analytical Biochemistry.2009(1)

[5]張景閣.金磁微粒純化細菌基因組DNA方法的研究[D].西北大學(xué),2011.

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