本試劑盒采用可以特異性結合核酸的離心吸附柱和獨特的緩沖液系統，樣品裂解后，DNA在高鹽條件下與硅膠膜結合，在低鹽、高pH值時DNA從硅膠膜上洗脫下來。本試劑盒用于從小劑量的血清/血漿中提取游離DNA，所得游離DNA可直接用作PCR模板、雜交等分子生物學實驗。

產品特點：
·采用硅基質膜吸附柱，簡單、快速提取循環(huán)核酸。
·無需酚仿等有機試劑，安全無毒。
· Carrier RNA可以從體系中高效捕獲微量核酸。
·徹底去除污染物和PCR抑制劑，方便下游應用。

試劑盒組成：

保存條件：室溫（15-25℃）干燥條件下，可保存12個月，更長時間的保存可置于2-8℃。2-8℃保存條件下，若溶液產生沉淀，使用前應將試劑盒內的溶液在室溫放置一段時間，必要時可在37℃水浴中預熱10min，以溶解沉淀。Carrier RNA配置成儲液后置于-20℃。

Carrier RNA儲存液的配制：
在次使用Carrier RNA時，請將Carrier RNA（310μg）溶解在310μl RNase-Free ddH2O中，將溶液分裝儲存于-20℃，此時該溶液的濃度為1 μg/μl；該儲存液應避免反復凍融，凍融次數不能超過3次。

注意事項：（請務必在使用本試劑盒之前閱讀此注意事項)
1．自備試劑：無水乙醇
2．樣品使用量的確定：
  吸附柱容量：700 μl
  最小洗脫體積：20 μl
  樣本體積：量200 μl
3．若緩沖液GA或GB中有沉淀，可在37℃水浴中重新溶解。
4．所有的樣品使用前請平衡到室溫（15-25℃)。
5．次使用試劑盒時，請按照試劑瓶上的提示在緩沖液GD和漂洗液PW中添加無水乙醇。
6．為了確保從微量樣本中得到更多的DNA，試劑盒配備了Carrier RNA。由于Carrier RNA本身是小核酸，所以得到的基因組測定OD₂₆₀值會比真實值偏大，建議將得到的基因組直接用PCR進行檢測。

使用方法：
使用前請先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。

1．取100 μl -200 μl血清/血漿到2ml的離心管中，如不足100 μl，加緩沖液GA到100 μl終體積。
2．加入20 μl Proteinase K溶液，渦旋混勻。
3．加入200 μl的緩沖液GB （可加入1 μl Carrier RNA儲存液，濃度為1 μg/μl），輕輕顛倒混勻，56℃孵育10min，并不時搖動樣品。簡短離心以去除管蓋內壁的液滴。
注意：加入緩沖液GB時可能會產生白色沉淀，一般56℃放置時會消失，不會影響后續(xù)實驗。如溶液未變清亮，說明細胞裂解不徹底，可能導致提取DNA量少和提取出的DNA不純。
4．加入200 μl的乙醇（96-100%）。如果室溫超過25℃，請將乙醇置冰上預冷。輕輕顛倒混勻樣品，室溫放置5 min，簡短離心以去除管蓋內壁的液滴。
5．將上一步所得溶液添加到一個吸附柱CR2中（吸附柱放入收集管中），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
6．向吸附柱CR2中加入500 μl緩沖液GD（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
7．向吸附柱CR2中加入600 μl漂洗液PW（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇）12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
8．重復操作步驟7。
9．12000rpm （~13400×g)離心2 min，倒掉廢液。將吸附柱CR2置于室溫放置2-5 min，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。
  注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應（酶切、PCR等）實驗。
10．將吸附柱CR2轉入一個干凈的離心管中，向吸附膜中間位置懸空滴加20-50 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2-5 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min，將溶液收集到離心管中。
  注意：洗脫緩沖液體積不應少于20 μl，體積過小影響回收效率。為增加基因組DNA的得率，可將離心得到的溶液再次加入吸附柱CR2中，室溫放置2 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液應保證其pH值在7.0-8.5范圍內，pH值低于7.0會降低洗脫效率；且DNA產物應保存在-20℃，以防DNA降解。