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單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增試劑盒的應(yīng)用

2021/7/1 11:29:31

背景[1-3]

單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增試劑盒基于多重鏈置換擴(kuò)增的Phi29 DNA聚合酶等溫?cái)U(kuò)增體系,Phi29 DNA聚合酶是從Bacillus subtilis噬菌體Phi29中克隆出的嗜溫DNA聚合酶,利用基因重組技術(shù),在大腸桿菌中進(jìn)行表達(dá)后經(jīng)多次純化分離而得。Phi29 DNA聚合酶具有很強(qiáng)的鏈置換活性,可實(shí)現(xiàn)對(duì)DNA復(fù)雜結(jié)構(gòu)的解鏈與復(fù)制。同時(shí)具有高效的DNA合成能力,可連續(xù)合成多達(dá)70kb的DNA片段。Phi29 DNA聚合酶具有很強(qiáng)的3’→5’外切酶活性,保真度高于絕大多數(shù)高保真酶,因此Phi29 DNA聚合酶特別適合用于全基因組擴(kuò)增。

單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增

本試劑盒可以實(shí)現(xiàn)單個(gè)細(xì)胞或者少量樣本的全基因組無(wú)差別擴(kuò)增,一個(gè)反應(yīng)可以達(dá)到40ug的全基因組DNA。低質(zhì)量樣品會(huì)影響DNA的最終產(chǎn)量,如果以DNA樣品為模板,需避免使用降解的DNA作為起始模板。

操作步驟:

適用于以1-1000個(gè)新鮮配制的細(xì)胞樣品作為模板,以保證起始基因組的完整性。

1、將細(xì)胞用PBS洗滌三次。

2、取一倍體積的細(xì)胞,加入一倍體積的Cell Lysis Buffer,輕輕混勻(勿渦旋混勻)后置于冰上放置10min。

3、加入一倍體積的Neutralization Buffer,輕輕混勻,勿渦旋混勻。

4、從上述混合液中取3μL樣品,加入7μL無(wú)菌水,10μL Reaction Buffer。將20uL上述處理后的樣品加入到25uL GenoPhi29 Buffer中。

注意:如果不進(jìn)行后續(xù)反應(yīng),需冰上放置。

5、加入5μL GenoPhi29 Enzyme,30℃反應(yīng)3h。

注意:65℃,10min失活Phi29 DNA聚合酶。

6、擴(kuò)增產(chǎn)物是高濃度基因組DNA,需要將擴(kuò)增產(chǎn)物用無(wú)菌水或者TE緩沖液進(jìn)行稀釋后進(jìn)行下游實(shí)驗(yàn)。

應(yīng)用[4][5]

用于基于單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增的同時(shí)檢測(cè)基因點(diǎn)突變與染色體拷貝數(shù)變異的高通量測(cè)序方法的建立與評(píng)估

通過(guò)活檢廢棄卵裂球胚胎結(jié)合分離外周血單個(gè)白細(xì)胞,進(jìn)行單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增。研究高通量測(cè)序文庫(kù)構(gòu)建方法對(duì)DNA高通量測(cè)序測(cè)序覆蓋度、敏感性、特異性等的影響;研究不同測(cè)序深度及獲取數(shù)據(jù)量對(duì)DNA高通量測(cè)序測(cè)序覆蓋度、敏感性、特異性等的影響;建立基于單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增的基因點(diǎn)突變及染色體拷貝數(shù)變異的高通量測(cè)序方法,優(yōu)化單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增產(chǎn)物高通量測(cè)序流程。

方法:在體視鏡下分離已知致病突變位點(diǎn)的β地中海貧血患者外周血單個(gè)白細(xì)胞、活檢廢棄卵裂球胚胎。隨后進(jìn)行單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增,以單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增產(chǎn)物作為模板,對(duì)HBB基因目標(biāo)區(qū)域進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

采用兩種方法構(gòu)建高通量測(cè)序文庫(kù):(1)單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增產(chǎn)物及PCR產(chǎn)物按1:99;3:97;5:95及10:90的比例混合后,再構(gòu)建高通量測(cè)序文庫(kù);

(2)單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增產(chǎn)物及PCR產(chǎn)物分別構(gòu)建高通量測(cè)序文庫(kù),兩種測(cè)序文庫(kù)按1:99;3:97;5:95及10:90的比例混合。0.1×、2×測(cè)序深度下進(jìn)行高通量測(cè)序。通過(guò)比較各檢測(cè)方案的目標(biāo)致病突變檢測(cè)效率、染色體覆蓋深度與覆蓋率、染色體拷貝數(shù)變異檢測(cè)的均一性,建立并優(yōu)化基于單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增的同時(shí)檢測(cè)基因點(diǎn)突變與染色體拷貝數(shù)變異的高通量測(cè)序方法。

用5例已知致病突變位點(diǎn)的β地中海貧血患者外周血單個(gè)白細(xì)胞和5例廢棄卵裂球胚胎對(duì)所建立的方法進(jìn)行擴(kuò)大驗(yàn)證。

結(jié)果:所有檢測(cè)方案對(duì)目標(biāo)致病突變檢測(cè)的靈敏度和特異性均為100%。

參考文獻(xiàn)

[1]Single-cell whole-genome analyses by Linear Amplification via Transposon Insertion(LIANTI)[J].Chongyi Chen,Dong Xing,Longzhi Tan,Heng Li,Guangyu Zhou,Lei Huang,X.Sunney Xie.Science.2017(6334)

[2]Live births after simultaneous avoidance of monogenic diseases and chromosome abnormality by next-generation sequencing with linkage analyses.[J].Yan Liying,Huang Lei,Xu Liya,Huang Jin,Ma Fei,Zhu Xiaohui,Tang Yaqiong,Liu Mingshan,Lian Ying,Liu Ping,Li Rong,Lu Sijia,Tang Fuchou,Qiao Jie,Xie X Sunney.Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America.2015(52)

[3]Successful implantation and live birth of a healthy boy after triple biopsy and double vitrification of oocyte-embryo-blastocyst[J].Ermanno Greco,Anil Biricik,Rocio P Cotarelo,Elisabetta Iammarone,Patrizia Rubino,Jan Tesarik,Francesco Fiorentino,Maria Giulia Minasi.SpringerPlus.2015(1)

[4]Validation of a semiconductor next‐generation sequencing‐based protocol for preimplantation genetic diagnosis of reciprocal translocations[J].S.Bono,A.Biricik,L.Spizzichino,A.Nuccitelli,M.G.Minasi,E.Greco,F.Spinella,F.Fiorentino.Prenat Diagn.2015(10)

[5]邱碧原.基于單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增的同時(shí)檢測(cè)基因點(diǎn)突變與染色體拷貝數(shù)變異的高通量測(cè)序方法的建立與評(píng)估[D].成都中醫(yī)藥大學(xué),2018.

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